ИСТИНА |
Войти в систему Регистрация |
|
Интеллектуальная Система Тематического Исследования НАукометрических данных |
||
Сложность изучения функциональной роли конкретных калиевых каналов в естественном биологическом окружении связана с ограниченной селективностью известных модуляторов их активности, а для ряда каналов - с отсутствием высокоселективных лигандов. Для детального изучения функциональной роли калиевых каналов с учетом их индивидуальных особенностей, для выявления уровня экспрессии и активности этих каналов в клетках и тканях в норме и патологии нужны новые молекулярные инструменты (в том числе флуоресцентные). Разработка этих молекулярных инструментов может вестись на основе высокоаффинных и селективных лигандов этих каналов. Целью проекта является изучение молекулярных основ селективности взаимодействия пептидных лигандов с калиевыми каналами, разработка принципов и способов конструирования селективных высокоаффинных пептидных блокаторов калиевых каналов с использованием оригинальных разработок на основе современных методов молекулярного моделирования, биоинженерии, протеомики и флуоресцентной микроскопии. Поставленная задача будет решаться на примере представителей потенциал-зависимых калиевых каналов Kv1.1, Kv1.2, Kv1.3, Kv1.6, представителей кальций-активируемых калиевых каналов КСа2.3 , КСа3.1 и представителя каналов входящего выпрямления Kir1.1. Успешное решение задачи для этих каналов подтвердит применимость и создаст условия для масштабного использования разработанных методических подходов в исследованиях других эукариотических калиевых каналов.
Complicacy in the study of functional role of definite potassium channels in natural biological environment is related to restricted selectivity of known modulators of their activity or even to absence of highly selective ligands. New molecular instruments (including fluorescent ones) are required to study in detail a functional role of potassium channels and to reveal expression and activity levels of these channels in cells and tissue in normal and pathogenic states. Development of such molecular instruments can be carried out on the basis of highly active and selective channel ligands. The aim of the project is the study of molecular basis for selectivity of interactions between peptide ligands and potassium channels, the development of principles and means for design of selective high-affinity potassium channel peptide blockers using original approaches based on the state-of-the-art molecular modeling, bioengineering, proteomics and fluorescent microscopy techniques. This task will be solved for the representatives of voltage-gated potassium channels Kv1.1, Kv1.2, Kv1.3, Kv1.6, the representative of calcium-activated potassium channels КСа2.3 , КСа3.1 and the representative of inwardly rectifying potassium channels Kir1.1. Successful solution of the task for these channels will confirm applicability of the developed methods to the extended study of other eukaryotic potassium channels also.
Изучение молекулярных основ, определяющих селективность взаимодействия лигандов с конкретными типами каналов, и систематизация этих данных для различных типов каналов позволит разработать научно-обоснованные принципы направленной коррекции активности каналов, предложить новые способы создания селективных блокаторов, которые смогут найти широкое применение в исследовательской и медико-биологической практике. Конструируемые пептидные блокаторы призваны стать молекулярными инструментами для изучения: тканеспецифичных функций целевых ионных каналов, вовлеченности этих каналов в развитие различных заболеваний, возможности избирательной коррекции анормальной гиперактивности целевых каналов, применимости селективных пептидов-блокаторов при терапии социально-значимых заболеваний. Полученные результаты будут опубликованы в виде серии научных статей.
Участники проекта имеют многолетний опыт работы в области молекулярного моделирования. К области нашей компетенции относятся моделирование структуры белков и пептидов, комплексов белков с лигандами, а также белок-липидных систем, имитирующих биологические мембраны. На примере канала Kv1.3 отработана методика моделирования структуры калиевых каналов по гомологии с известной структурой канала Kv1.2 и других родственных каналов. Отработана методика моделирования структуры пептидов как по гомологии с уже известными структурами сходных пептидов, так и ab initio. Отработана методика белок-белкового докинга для получения моделей комплексов калиевых каналов с петидами. Разработаны протоколы молекулярно-динамических расчетов систем «липидный бислой + канал + пептид» для моделирования связывания пептидов с каналами. Участниками проекта разработаны оригинальные клеточные системы поиска и исследования поровых блокаторов калиевых каналов. Системы включают в себя: (1) сферопласты E.coli, презентирующие на мембране гибридные белки KcsA-Kv1.x, сконструированные путем встраивания лиганд-связывающих сайтов калиевых каналов человека Kv1.x в гомологичный участок бактериального канала KcsA; (2) высокоаффинный флуоресцентно-меченный лиганд - агитоксин 2; (3) методику измерения констант связывания анализируемых лигандов с сайтами связывания Kv1.x-каналов в составе гибридных белков на мембране сферопластов с применением метода конфокальной микроскопии. Эти клеточные системы позволяют количественно оценивать избирательность связывания лиганда с поровой петлей различных калиевых каналов, обнаруживать высокоаффинные поровые блокаторы каналов Kv1.x, как среди индивидуальных органических соединений и пептидов, так и в сложных смесях, таких, как яды членистоногих. Для поиска высокоаффинных лигандов ионных каналов в ядах членистоногих предложен и успешно апробирован новый протеомный подход.
Комплексный подход к изучению молекулярных основ взаимодействия пептидных блокаторов с каналом, разработанный нами в процессе выполнения проекта, включает современные методы молекулярного моделирования, биоинженерии, протеомики и флуоресцентной микроскопии. Основу наших исследований составляет применение биоинженерных способов представления лиганд-связывающих сайтов калиевых каналов в составе гибридов с каналом KcsA, а также флуоресцентные методы детекции взаимодействия этих сайтов с пептидными блокаторами. Разработанные нами биоинженерные системы, позволяющие рассчитывать величину Kd и, таким образом, количественно оценивать аффинность блокатора, были успешно применены для изучения блокаторов каналов Kv1.1, Kv1.2, Kv1.3, Kv1.6 и KCa3.1. Комплексный подход позволил решить масштабные научные задачи: - выявление молекулярного разнообразия пептидных блокаторов яда скорпиона Mesobuthus eupeus с использованием транскриптомных и пептидомных баз данных; - установление интерфейса взаимодействия нейрональных потенциал-зависимых каналов Kv1.1 и Kv1.6 с пептидными блокаторами яда скорпиона (семейства α-KTX3) с привлечением данных молекулярного моделирования, а также экспериментальных данных по взаимодействию модельных гибридных каналов с пептидными блокаторами и их мутантными, исследование избирательности взаимодействия пептидов с поровой частью калиевых каналов; - создание нового типа флуоресцентных блокаторов калиевых каналов - а именно, генокодируемых флуоресцентно-меченых пептидных блокаторов. Блокаторы этого типа созданы на основе биоинженерного конструирования рекомбинантных молекул, в которых флуоресцентные белки eGFP и RFP слиты с N-концевой последовательностью пептидного блокатора. Активность двух таких блокаторов - eGFP-OSK1 и RFP-AgTx2 - в отношении целевых потенциал-зависимых калиевых каналов Kv1-семейства была успешно подтверждена тестированием на панели модельных каналов флуоресцентными методами, а также на панели эукариотических каналов методами электрофизиологии. Преимуществами этого типа блокаторов является детерминированность их структуры, возможность быстрого и простого получения больших количеств флуоресцентного лиганда. Блокаторы могут быть использованы для целей скрининга калиевых блокаторов (например, при поиске новых блокаторов в ядах животных - многокомпонентных смесях природного происхождения), а также для визуализации калиевых каналов при изучении их активности и клеточной/тканевой локализации; - разработка и создание методом биоинженерии универсального подхода к супер-продукции рекомбинантных дисульфид-богатых пептидных блокаторов с выходом активного пептида от 12 до 22 мг в расчете на 1 л культуры; - создание ряда мутантных форм пептидных блокаторов на основе структуры агитоксина 2 (AgTx2) с повышенной аффинностью и селективностью к каналу Kv1.3 - новой терапевтической мишени аутоиммунных заболеваний.
грант РНФ |
# | Сроки | Название |
1 | 14 июля 2014 г.-31 декабря 2014 г. | Исследование молекулярных основ селективности взаимодействия пептидных блокаторов с калиевыми каналами |
Результаты этапа: 1) Построены структурные модели калиевых потенциал-зависимых каналов Kv1.1, Kv1.2 и Kv1.6, а также модели комплексов этих каналов и канала Kv1.3 с рядом высокоактивных пептидных блокаторов, включая агитоксин 2 (AgTx2), хонготоксин (HgTx), калиотоксин (KTx), маргатоксин (MgTx), токсин OSK1 и недавно обнаруженный нами в яде скорпиона M.eupeus блокатор с условным обозначением М1 (всего более 20 моделей). Проведен расчет молекулярной динамики комплексов в водном растворе с имитацией мембранного окружения для определения преимущественных вариантов расположения блокатора составе комплекса. Проведен анализ различных вариантов ориентации блокаторов относительно каналов, причем сканирование угла поворота блокатора в диапазоне от -45 до +45 градусов выполнено впервые. Обнаружены три возможных ориентации AgTx2 в комплексе с каналами Kv1.1, Kv1.2, Kv1.3 и Kv1.6, которые отличаются углом поворота относительно оси канала. Проведен расчет взаимодействий токсинов с каналами для всех возможных ориентаций. Определены остатки блокаторов, образующие интерфейс взаимодействия с каналами Kv1.1, Kv1.2, Kv1.3 и Kv1.6. Предложен и обоснован ряд аминокислотных замен (8 вариантов) для повышения аффинности и селективности взаимодействия агитоксина с различными каналами. 2) Разработана биоинженерная клеточная система для поиска и изучения блокаторов потенциал-чувствительного калиевого канала Kv1.2 на основе сконструированного гибридного рецептора KcsA-Kv1.2, содержащего лиганд-связывающий сайт Kv1.2, и флуоресцентно-меченого лиганда - хонготоксина (R-HgTx). Для разработки системы были решены задачи оптимизации экспрессии гибрида KcsA-Kv1.2 в клетках E.coli c целью повышения общего уровня биосинтеза целевого белка и уровня его встраивания в цитоплазматическую мембрану клетки. Оптимальная экспрессия достигнута путем подбора экспрессионного штамма и условий культивирования клеток. Выбор флуоресцентно-меченого лиганда осуществлен среди фракций родамин-меченых пептидных блокаторов - R-HgTx и марготоксина (R-MgTx), рецептор-связывающая активность которых была предварительно проверена на гибридных рецепторах KcsA-Kv1.1 и KcsA-Kv1.3. По сравнению с исходными пептидами (рекомбинантным маргатоксином и химически-синтезированным хонготоксином) аффинность меченых пептидов к гибридным рецепторам KcsA-Kv1.Х (Х=1, 2 и 3) оказалась довольно низкой, что связано с эффектом введения флуоресцентной метки по одному из остатков лизина и, как следствие, нарушением связей лиганд-рецептор. С целью улучшения аффинности флуоресцентно-меченого лиганда запланировано создание рекомбинантного R-HgTx, меченого по N-концу флуоресцентным белком. В опытах по конкурентному ингибированию связывания R-HgTx немечеными лигандами Kv1.2 канала - маргатоксином, хонготоксином, OSK1 и ChTx, было продемонстрировано специфичное и обратимое связывание R-HgTx с рецептором KcsA-Kv1.2 на мембране сферопластов. Для AgTx2, не имеющего сродства к Kv1.2, связывание с KcsA-Kv1.2 отсутствовало. Полученные данные свидетельствует о применимости сконструированной биоинженерной клеточной системы для изучения пептидных лигандов Kv1.2 канала и поиска новых пептидных блокаторов в ядах скорпионов. 3) Разработанный вариант биоинженерной клеточной системы на основе рецептора KcsA-Kv1.2 применен для поиска новых лигандов канала Kv1.2 в ядах скорпионов. Показано, что в цельных ядах скорпионов Mesobuthus eupeus и Buthacus arenicola присутствуют компоненты, способные вытеснять R-HgTx из комплексов с рецепторами KcsA-Kv1.2. В цельном яде скорпиона Euscorpus mingrelicus наличия таких компонентов не выявлено. При разделении цельного яда M.eupeus с помощью эксклюзионной хроматографии получены три «грубых» фракции, в одной из которых обнаружена целевая активность. Методом МАЛДИ-масс-спектрометрии установлено, что в активную фракцию яда входят пептиды с молекулярными массами от 2 до 9 кДа. Эта фракция была разделена с помощью обращенно-фазовой высокоэффективной жидкостной хроматографии (ОФ-ВЭЖХ) на 40 субфракций, содержащих индивидуальные компоненты яда M. eupeus. В настоящее время ведется исследование способности этих субфракций связываться с рецептором KcsA-Kv1.2, вытесняя из комплексов R-HgTx. Это исследование планируется завершить до конца декабря 2014 г и приступить к идентификации активных пептидов- лигандов Kv1.2. 4) Проведено конструирование двух вариантов гибридных рецепторов KcsA-КСа3.1 путем встраивания лиганд-связывающего сайта канала КСа3.1 в соответствующий участок бактериального канала KcsA. Конструирование проведено на основе выравнивания аминокислотных последовательностей порового домена KCa3.1, KcsA и других Kv1-каналов с помощью программы CLUSTALW и последующего анализа вторичных структур гибридов программой Psipred. Обе гибридные последовательности сохраняли вторичную структуру поровой петли, в том числе, альфа-спиральную укладку P-спирали. Фрагмент S5-P линкера канала KCa3.1, перенесенный в соответствующий участок KcsA, содержал а.о., являющиеся основными молекулярными детерминантами связывания канала с токсинами - OSK1, мауротоксином, ChTx. В штамме E.coli Lemo21(DE3) был достигнут высокий уровень экспрессии гибридных белков KcsA-КСа3.1 (-1 и -2). Проведен анализ образования комплексов между сферопластами, экспрессирующими KcsA-КСа3.1 (-1 и -2), и флуоресцентно-мечеными лигандами. В этих экспериментах использовали родамин-меченый мауротоксин (R-MTX) и гибридный флуоресцентный белок eGFP-OSK1. Высокая активность eGFP-OSK1 была предварительно подтверждена на рецепторах KcsA-Kv1.1 и KcsA-Kv1.3 (см. ниже). В случае обоих флуоресцентных лигандов связывания со сферопластами, экспрессирующими KcsA-КСа3.1 (-1 и -2) обнаружено не было. Возможными причинами этого результата являются: низкая аффинность блокатора OSK1 к каналу Kv1.2 (Kd=225 нМ), а также низкая аффинность R-MTX (фракции R-MTX не показали ожидаемой активности и при связывании с рецептором KcsA-Kv1.2). Для решения возникших проблем начаты повторный синтез родамин-меченых производных МТХ, а также создание МТХ, меченого флуоресцентным белком по N-концу с использованием технологии, успешно разработанной в данном проекте. Цель этих работ - создание высоко активного флуоресцентно-меченого лиганда к каналу КСа3.1. С этими новыми лигандами планируется проведение работ, направленных на улучшение встраивания KcsA-KCa3.1в мембрану клеток подобно тому, как это было сделано нами для KcsA-Kv1.2. Если потребуется, предусмотрено введение в состав гибридов KcsA-KCa3.1 дополнительных молекулярных детерминант связывания с блокаторами, расположенных в линкере P-S6 канала KCa3.1. Таким образом, текущими задачами в плане разработки системы детекции лигандов канала КСа3.1 остается создание высокоаффинного флуоресцентно-меченого лиганда к этому каналу, и получение достоверного связывания этого лиганда с гибридными рецепторами KcsA-KCa3.1. 5) Впервые сконструированы и получены функционально-активные генокодируемые флуоресцентные белки - eGFP-OSK1 и TagRFP-AgTx2, высокоаффинные блокаторы потенциал-чувствительных калиевых каналов. Выбор флуоресцентных белков (eGFP и TagRFP) был основан на их спектральных свойствах - высоком квантовом выходе флуоресценции, устойчивости к фотовыцветанию, а также на стабильности мономерной формы этих белков. В качестве пептидных блокаторов были использованы OSK1 и AgTx2, имеющие широкий спектр активности в отношении Kv1-каналов. Специально подобранные линкеры, соединяющие два «модуля» – флуоресцентный белок и блокатор каналов, являются неструктурированными гибкими аминокислотными последовательностями, не ограничивающими взаимодействие пептидного лиганда с белком-рецептором. Химерные флуоресцентные блокаторы были экспрессированы в клетках E.coli и выделены с высоким выходом - 10-100 мг/л культуры. Правильность сворачивания и активность химерных белков подтверждены наличием характеристичной флуоресценции и способности связываться на клеточных системах, экспрессирующих в мембране KcsA-Kv1.1 и KcsA-Kv1.3. Анализ выявил наличие высокоафинного связывания гибридных лигандов со значениями констант диссоциации (Кd) для комплексов RFP-AgTx2 с KcsA-Kv1.1 и KcsA-Kv1.3 соответственно 4,1 и 0,6 нМ. Для комплексов eGFP-OSK1 с KcsA-Kv1.1 и KcsA-Kv1.3, величины Kd составили соответственно 37 и 4,5 нМ. Таким образом, использование флуоресцирующих белков в качестве флуоресцентной метки блокаторов Kv-каналов позволяет получить высокаффинные флуоресцентные зонды и преодолеть основную трудность химического мечения органическими красителями - малые полезные выходы реакции (10-20%) из-за наличия нескольких сайтов, по которым происходит мечение пептида. Установлено, что немеченые рекомбинантные AgTx2 и OSK1 вытесняют RFP-AgTx2 и eGFP-OSK1 из комплексов с KcsA-Kv1.1 и KcsA-Kv1.3, что подтверждает специфичность и обратимость связывания гибридных флуоресцирующих лигандов. При измерениях методом конкурентного ингибирования связывания кажущиеся константы диссоциации AgTx2 и OSK1 оказываются сравнимыми с константами, полученными альтернативными методами на полноразмерных эукариотических каналах Kv1.1 и Kv1.3. Таким образом, нами впервые получены высокоаффинные гибридные лиганды каналов Kv1, меченые флуоресцентными белками. Простота и надежность получения таких гибридов, возможность достоверных количественных измерений с их использованием открывают новые перспективы в исследованиях каналов Kv1. | ||
2 | 1 января 2015 г.-31 декабря 2015 г. | Исследование молекулярных основ селективности взаимодействия пептидных блокаторов с калиевыми каналами |
Результаты этапа: Построены структурные модели комплексов канала KCa3.1 с токсинами ChTx и MTx, а также модели комплексов KCa2.3 с ScTx и MTx . Проведен расчет молекулярной динамики, рассчитаны и описаны интерфейсы взаимодействия в данных комплексах. Построены структурные модели комплексов канала Kv1.2 с рядом пептидных лигандов из яда M. eupeus: MeuKTx1 (αKTx8.6), MeuKTx3 (αKTx3.13) и MeuTx3B (αKTx16.4). Выявлены ключевые остатки, ответственные за связывание с каналом Kv1.2. Продолжена оптимизация биоинженерной системы для поиска и изучения пептидных блокаторов канала Kv1.2 на основе гибридного рецептора KcsA-Kv1.2. На основе eGFP сконструированы и получены рекомбинантные генокодируемые флуоресцентные лиганды канала Kv1.2 - eGFP-HgTx, eGFP-MgTx, eGFP-MTX. Рецептор-связывающая активность генокодируемых флуоресцентных лигандов была изучена и подтверждена с помощью флуоресцентной системы детекции на гибридных каналах KcsA-Kv1.3 и KcsA-Kv1.2. Построены структурные модели комплексов каналов Kv1.1, Kv1.2, Kv1.3 и Kv1.6 с пептидом M1. Предложены 10 возможных мутаций для повышения селективности связывания с тем или иным типом канала. На основе молекулярного моделирования комплексов блокатора AgTx2 с Kv1- каналами были выявлены сходства и различия во взаимодействии AgTx2 с каналами Kv1.1, Kv1.3 и Kv1.6 и идентифицированы а.к. остатки, определяющие наиболее существенные взаимодействия. На основе этого анализа был предложен ряд аминокислотных замен AgTx2 способных изменить аффинность блокатора к целевым Kv1- каналам. Методами биоинженерии были получены восемь мутантов AgTx2 с одной или двумя заменами в а.к. последовательности, и их активность была охарактеризована на панели гибридных каналов KcsA-Kv1.1, KcsA-Kv1.3 и KcsA-Kv1.6. Выявлены мутации, повышающих селективность связывания блокатора с определенным типом каналов. С помощью разработанной нами экспрессионной системы получен рекомбинантный сциллатоксин. На основе сциллотоксина (ScTx) и зеленого флуоресцентного белка eGFP сконструирован и впервые получен рекомбинантный генокодируемый флуоресцентный лиганд eGFP-ScTx, предназначенный для использования в качестве флуоресцентного зонда в биоинженерной системе. С целью разработки биоинженерной системы для изучения блокаторов KCa2.3 каналов были сконструированы два генетических варианта гибридных каналов KcsA-KCa2.3-1 и KcsA-KCa2.3-2, содержащие молекулярные детерминанты связывания с блокаторами, определенные по данным молекулярного моделирования. На основе харибдотоксина (ChTx) и зеленого флуоресцентного белка eGFP сконструированы и впервые получены рекомбинантные генокодируемые флуоресцентные лиганды eGFP-ChTx и eGFP-MTX, предназначенные для использования в качестве флуоресцентных зондов в биоинженерной системе на основе каналов KcsA-KCa3.1. Были сконструированы новые генетические варианты гибридных каналов KcsA-KCa3.1-1(Y82V) и KcsA-KCa3.1-2 (Y82V), содержащие дополнительную важную молекулярную детерминанту связывания с пептидными блокаторами 82V. Показано, что, несмотря на высокий уровень биосинтеза каналов KcsA-KCa3.1 в клетках бактерий, их мембранная презентация происходит неэффективно. С применением клеточной тест-системы на основе KcsA-Kv1.3 проведено тестирование ядов двух скорпионов (Androctonus amoreuxi и Buthacus arenicola), выявившее присутствие в них лигандов Kv1.3-канала. Проведено разделение ядов A. amoreuxi и B. аrenicola на фракции и в результате тестирования обнаружено около 20 активных фракций, большинство из которых (с учетом ограниченных данных о токсинах из этих ядов) могут оказаться новыми высокоактивными блокаторами Кv1-каналов. | ||
3 | 1 января 2016 г.-31 декабря 2016 г. | Исследование молекулярных основ селективности взаимодействия пептидных блокаторов с калиевыми каналами |
Результаты этапа: Методом моделирования по гомологии был построен калиевый канал входящего выпрямления Kir1.1, а с помощью метода молекулярного докинга получены модели его комплексов с диким типом и мутантными формами токсина тертиапина (TPN). Два кластера решений докинга с оптимальными энергетическими характеристиками (с проникновением в селективный фильтр остатков His12 или Lys17 TPN) были использованы для построения комплексов, впоследствии уравновешенных с помощью метода молекулярной динамики. Согласно проведенному анализу контактов и рассчитанной энергии связывания дикий тип TPN связывается с порой канала Kir1.1 за счет Lys17, мутантная форма TPN-Q – за счет His12. Анализ комплексов Kir1.1 с мутантами тертиапина K17A и R7A показал значительное снижение аффинности связывания токсинов, что доказывает важную роль остатков К17 и R7 в образовании комплексов TPN с каналом Kir1.1. Моделирование комплексов калиевого канала Kir1.1 с диким типом и мутантными формами токсина TPN позволило получить информацию о структуре образуемых комплексов, а также о конкретных контактах, возникающих между каналом и пептидами. Проведена разработка биоинженерной системы для исследования связывания лигандов с малоизученным калиевым каналом Kir1.1. Сконструированы гибридные белки KcsA-rKir1.1 и оптимизирована их экспрессия в мембране E.coli. Методами биоинженерии созданы генетические конструкции, направляющие биосинтез в E.coli рекомбинантного пептидного блокатора канала rKir1.1 - тертиапина (TPN-KQ) и его флуоресцентно-меченого производного - GFP-TPN-KQ. Разработаны процедуры выделения и ренатурации TPN-KQ и GFP-TPN-KQ. Показано, что флуоресцентно-меченный лиганд TPN-Q-ATTO-633 имеет сродство к участку Р-петли (FYPPDNRT) канала Kir1.1 крысы и связывается со сферопластами, экспрессирующими каналы KcsA-rKir1.1. Обнаружено, что ни TPN-KQ, ни TPN-LQ не способны конкурировать с TPN-Q-ATTO-633 и вытеснять его из мест связывания с гибридным каналом KcsA-rKir1.1. Этот результат может свидетельствовать о различных модах взаимодействия TPN-Q и TPN-LQ/TPN-KQ с каналом и требует дальнейшей разработки пары флуоресцентный лиганд/немеченый лиганд для совершенствования биоинженерной системы изучения блокаторов Kir1.1 каналов. С целью увеличения уровня мембранной презентации каналов KcsA-Kv1.2 и KcsA-КСа3.1 были проведены опыты по культивированию этих каналов в более эффективных по сравнению с BL21(DE3) экспрессионных штаммах E.coli фирмы NEB (UK), таких как T7 Express Iq, T7 Express Lys/Iq, а также Lemo 21(DE3). Проведенные исследования показали, что в нашем случае применение штаммов фирмы NEB не повышает общий уровень экспрессии гибридных каналов и не облегчает их встраивание в мембрану с образованием функционально активных тетрамеров. Разработан прямой метод определения мембранной локализации гибридных калиевых каналов в бактериях. Метод позволяет решать важную, но трудно контролируемую задачу определения эффективности встраивания гибридных каналов на основе KcsA в цитоплазматическую мембрану E.coli. В основу биоинженерного метода положена идея конструирования флуоресцирующих каналов путем присоединения к С-концу гибридного канала флуоресцентного белка RFP. После оптимизации длины линкера, соединяющего С-конец гибридного канала и RFP, и условий экспрессии флуоресцентных каналов, была получена белковая конструкция KcsA-Kv1.3-RFP, которая эффективно синтезируется в клетках BL21(DE3), ярко флуоресцирует, встраивается в мембрану и обеспечивает связывание eGFP-AgTx2 с константой диссоциации комплекса (Кd=2.4 нМ) сравнимой с Kd на немеченых KcsA-Kv1.3-каналах (Кd=1.5 нМ). Разработка аналогичной конструкции для канала KcsA-KCa3.1 позволила установить, что уровень мембранной локализации канала KcsA-KCa3.1-RFP при прочих равных условиях существенно ниже, чем в случае канала KcsA-Kv1.3-RFP. Полученные результаты свидетельствует о перспективности разработанного подхода для оптимизации экспрессии и контроля за мембранным встраиванием новых каналов на основе KcsA. Для сферопластов, экспрессирующих флуоресцентные гибридные каналы, разработана цитометрическая методика измерения связывания GFP-меченых блокаторов и количественного анализа их конкурентного вытеснения исследуемыми соединениями. Написан программный скрипт (https://anaconda.org/sharonov/fcsgroupfit), позволяющий в автоматическом режиме проводить вычисления для всего массива измеренных данных и рассчитывать константы диссоциации комплексов флуоресцентно-меченых лигандов, а также константы диссоциации немеченных лигандов при вытеснении ими меченых. Методом проточной цитометрии в автоматизированном режиме были измерены константы диссоциации для флуоресцентных и немеченных токсинов AgTx2, ChTx с каналом RFP-KcsA-Kv1.3, которые совпадают в пределах погрешности с константами, полученными ранее методом конфокальной микроскопии. Адаптация биоинженерной клеточной системы для анализа с помощью проточной цитометрии существенно расширяет потенциал её применения, в частности, для высокопроизводительного скрининга соединений – потенциальных блокаторов Kv-каналов. Методами молекулярного моделирования построены комплексы каналов Kcsa Kv1.1, Kv1.2, Kv1.3 и Kv1.6 с 12 мутантными формами пептидного блокатора калиевых каналов AgTx2 (R31G, S7K, K19S, H34K, S11G, T9G, T9G/G10L, N30A/K32A, S11G/H34K, S11G/K19S, K19S/H34K, T9L/G10L/H34K). Для этих комплексов проведен расчет молекулярной динамики по специально разработанным протоколам и детально определена совокупность контактов на интерфейсах взаимодействия с описанием их типа (стэкинг-взаимодействия, гидрофобные контакты, водородные и ионные связи) и силы взаимодействий. Проведено сопоставление наблюдаемых взаимодействий в комплексах с экспериментально измеренными константами связывания. Обнаружено, что введение точечных мутаций в одной части комплекса может вызывать существенные компенсаторные изменения взаимодействий в отдаленных от мутации областях комплексов, что способно снижать/изменять ожидаемый эффект точечных мутаций. Предложены и обоснованы 12 новых вариантов модификации природных блокаторов для улучшения их аффинности и/или селективности к поровому домену каналов Kv1.х (х=1-3, 6). С учетом результатов молекулярного моделирования осуществлен рациональный дизайн четырех мутантных форм AgTx2, содержащих две или три точечные аминокислотные замены. Рекомбинантные мутантные пептиды были получены методом сайт-направленного мутагенеза с помощью разработанной нами биоинженерной системы продукции пептидных токсинов. На сферопластах, экспрессирующих каналы KcsA-Kv1.х, проведено изучение аффинности мутантных пептидов к поровым доменам этих каналов. Установлено, что по сравнению с исходным AgTx2 мутанты AgTx2(S11G/K19S) и AgTx2(K19S/H34K) характеризуются значительным усилением селективности связывания с поровым доменом канала Kv1.3 по сравнению с Kv1.1 при сохранении или даже усилении сродства к Kv1.3. Эти мутанты AgTx2 могут быть использованы в дальнейшем для разработки высокоаффинного и высокоселективного блокатора Kv1.3 канала, перспективного для медицинского применения. Используя для идентификации активных фракций биоинженерные клеточные системы на основе каналов KcsA-Kv1.х, из яда скорпиона B. arenicola в индивидуальном состоянии получено 4 активных компонента, проявляющих активность лигандов порового домена Kv1.х-каналов. Были идентифицированы молекулярные массы этих пептидов, которые находятся в диапазоне 3-4 кДа. Для одного компонента была установлена частичная N-концевая аминокислотная последовательность. В транскриптоме скорпиона Orthochirus scrobiculosus была обнаружена последовательность кДНК нового потенциального токсина. Было произведено фракционирование яда O. scrobiculosus, среди компонентов которого удалось идентифицировать искомый токсин (OSK3). Аминокислотная последовательность OSK3 была подтверждена N-концевой ступенчатой деградацией по Эдману. Произведено электрофизиологическое тестирование нового токсина на панели калиевых каналов, построены кривые «доза-ответ» для Kv1.2, Kv1.3 и Kv1.6, а также рассчитаны значения IC50. |
Для прикрепления результата сначала выберете тип результата (статьи, книги, ...). После чего введите несколько символов в поле поиска прикрепляемого результата, затем выберете один из предложенных и нажмите кнопку "Добавить".