Экспресс-определение антибиотикорезистентности бактерий в биологических образцах с помощью спектроскопии гигантского комбинационного рассеянияНИР

Rapid determination of antibiotic resistance of bacteria in biological samples using surface-enhanced Raman spectroscopy

Соисполнители НИР

Саратовский научный центр Российской академии наук Соисполнитель

Источник финансирования НИР

грант РНФ

Этапы НИР

# Сроки Название
1 8 мая 2024 г.-31 декабря 2024 г. Экспресс-определение антибиотикорезистентности бактерий в биологических образцах с помощью спектроскопии гигантского комбинационного рассеяния
Результаты этапа: Созданы несколько типов ГКР-активных мембран, из которых мембрана с магнетронным напылением оказалась наиболее перспективной, давая интенсивные и воспроизводимые ГКР-спектры. Получены микрофотографии РЭМ, на которых наблюдается сохранение структуры напыленной поверхности после фильтрации биологических объектов. Были выбраны оптимальные параметры регистрации спектров формазана. При использовании источника лазерного излучения с длиной волны 638 нм наблюдается эффект резонансного комбинационного рассеяния света. Максимальная эффективность достигалась на серебряных ГКР-поверхностях при возбуждении источником лазерного излучения 638 нм. Выбраны патогены для исследования, а также определена их устойчивость к антибиотикам. Были получены данные по определению МПК для нескольких штаммов микроорганизмов: Escherichia coli, Klebsiella pneumoniae и Staphylococcus aureus. Показано, что спектроскопия комбинационного рассеяния (КР) сопоставима по чувствительности определения формазана с колориметрическим методом, однако, КР дает специфическое определение формазана, исключая эффект среды. Оба метода удовлетворительно работают для 1-2 MFU бактерий (10^8 КОЕ/мл), не допуская дальнейшее снижение титра бактерий. В присутствие антибиотиков интенсивность КР-спектров чувствительных штаммов снижается, позволяя определять МПК как концентрацию, при которой наблюдается 50% снижение интенсивности спектра формазана. Показана хорошая корреляция между МПК, определенными КР и Е-тестом. Повышение чувствительности метода за счет использования ГКР-субстратов. В случае ГКР на золотых наночастицах предел обнаружения формазана составил 0,1 мкг/мл, что в 70 раз ниже, чем в случае КР-спектроскопии. Достоверное определение формазана наблюдалось при концентрации клеток в 3×10^5 КОЕ/мл в случае ГКР, тогда как для КР - 1×10^7 КОЕ/мл. Исследован эффект формы наночастиц на интенсивность ГКР-спектров формазана в бактериях. Золотые нанозвезды давали 5–10-кратно большую интенсивность спектра, в сравнении со сферическими наночастицами, в диапазоне титров бактерий 10^5–10^7 КОЕ/мл. Золотые нанозвезды давали наиболее интенсивный ГКР-сигнал, что делает их перспективным ГКР-субстратом для детекции формазана в биологических смесях. Были проведены работы с ГКР-активными мембранами. В случае высоких концентраций бактерий, 10^8-10^9 клеток E.coli штамм D1 в образце, в световом микроскопе можно увидеть большое количество материи, состоящей из длинных иголок (кристаллы формазана) и подкрашенных бактерий. Снижение концентрации бактерий позволяет увидеть отдельные объекты, 5-20 клеток на 50 мкм^2, дальнейшее снижение концентрации клеток в 10 раз позволяет выделять кадр с единичным объектом для съемки – 1-4 клетки на 50 мкм^2. Получены ГКР-спектры единичных бактерий. Титрование низких концентраций E. coli (штамм ΔtolC KanS 5’) было проведено на мембране 0,2 мкм. Было показано успешное определение бактерий вплоть до определения концентрации 10 КОЕ/мл, т.е. единичных бактерий в образце. Также мы попробовали оценить устойчивость к антибиотикам с использованием ГКР-мембран. Клетки E. coli ΔtolC в избытке канамицина имели сниженную интенсивность спектров. Аналогично, спектры S.aureus в присутствии 128 мкг/мл клиндамицина показали снижение конверсии МТТ с 90% до 60%. Аналогично, были получены спектры для Klebsiella pneumoniae, обработанных МТТ-реагентом и антибиотиком имипенемом в концентрации 8 мкг/мл. В этом случае в присутствии антибиотика снижалась более чем в 2 раза как интенсивность спектров формазана, так и конверсия МТТ. Организацией-соисполнителем синтезированы и охарактеризованы золотые наночастицы разных форм с разными стабилизаторами. В качестве наиболее перспективных для дальнейших исследований выбраны золотые нанозвезды с мицеллообразующим стабилизатором. Разработаны модели для расчета оптических спектров поглощения, рассеяния и экстинкции для разных типов наночастиц. Наночастицы были функционализированы ДНК-аптамером, специфично распознающим штамм ΔtolC E. coli. Полученные конъюгаты наночастиц и ДНК-аптамера использовались для качественной детекции бактерий посредством дот-анализа. Дот-анализ представляет собой разновидность твердофазного иммуноанализа. Для экспериментов использовалось 5 штаммов 4 видов бактерий: E. coli двух штаммов: ΔtolC и D1, S. aureus 209P, P. aeruginosa и A. baldaniorum Sp245. Полученные конъюгаты коллоидного золота и аптамера позволили не только осуществить специфическую детекцию и межвидовую дифференциацию, но и также различить разные штаммы бактерии E. coli. Установленный предел детекции для маркерных AuNPs составил 10^6 КОЕ/мл. (10 000 клеток в пробе). Маркерные SeNPs, функционализированные ДНК-аптамером также проявляли селективность в отношении штамма E. coli ΔtolC. Тем не менее, чувствительность анализа была ниже, чем для маркерных AuNPs: 10^7 КОЕ/мл (100 000 клеток в пробе). Подбор мембран и расходных материалов, совместимых с МТТ-реагентом и спектроскопией ГКР. Золотые нанозвезды были нанесены на полимерные мембраны для создания ГКР-активных поверхностей, имитируя накопление НЧ на тест-полоске. Нитроцеллюлозная, трековая и поливинилиденфторидная мембраны были исследованы. Измерение спектров формазана в концентрации 10 мг/мл показало, что в случае трековой мембраны наибольшее усиление сигнала наблюдается при наиболее низкой концентрации нанозвезд. Раствор формазана с концентрацией 0,1 мг/мл детектировался только на двух полимерных мембранах: трековой и поливинилиденфторидной. Низкая концентрация формазана (0,01 мг/мл) не детектировалась ни на одной мембране. Таким образом, трековые мембраны в сочетании с золотыми нанозвездами могут быть рекомендованы для определения формазана.
2 1 января 2025 г.-31 декабря 2025 г. Экспресс-определение антибиотикорезистентности бактерий в биологических образцах с помощью спектроскопии гигантского комбинационного рассеяния
Результаты этапа:
3 1 января 2026 г.-31 декабря 2026 г. Экспресс-определение антибиотикорезистентности бактерий в биологических образцах с помощью спектроскопии гигантского комбинационного рассеяния
Результаты этапа:
4 1 января 2027 г.-31 декабря 2027 г. Экспресс-определение антибиотикорезистентности бактерий в биологических образцах с помощью спектроскопии гигантского комбинационного рассеяния
Результаты этапа:

Прикрепленные к НИР результаты

Для прикрепления результата сначала выберете тип результата (статьи, книги, ...). После чего введите несколько символов в поле поиска прикрепляемого результата, затем выберете один из предложенных и нажмите кнопку "Добавить".