Электрохимические биосенсоры с настраиваемым линейным диапазоном для персональных глюкометровНИР

Electrochemical biosensors with adjustable linear range for personal glucometers

Источник финансирования НИР

грант РНФ

Этапы НИР

# Сроки Название
1 22 декабря 2021 г.-31 декабря 2022 г. Электрохимические биосенсоры с настраиваемым линейным диапазоном для персональных глюкометров
Результаты этапа: 1. Диффузионная подвижность медиаторов в мембранах с различным содержанием полиэлектролитов. Диффузионная подвижность низкомолекулярных медиаторов в полиэлектролитных мембранах, сформированных на поверхности электродов, зависит от заряда медиатора, полиэлектролита, а также плотности мембраны и может быть определена электрохимическими методами. В мембранах на основе отрицательно заряженного перфторсульфонированного полимера (ПФС) (0.3%) кажущийся коэффициент диффузии феррицианид-иона снижается на 3 порядка, в то время как катиона гексамминрутения (III) остается неизменным. При этом, в менее плотных мембранах, на основе 0.1% раствора ПФС, коэффициент диффузии феррицианид-иона снижается всего на порядок. Аномальное увеличение электрохимической активности гексацианоферрата калия с увеличением плотности мембраны наблюдается на электродах, модифицированных положительно заряженным при рН 6.0 биополимером – хитозаном, что является результатом дополнительной адсорбции медиатора в мембране. В соответствии с данными циклической вольтамперометрии и спектроскопии электрохимического импеданса количество адсорбированного гексацианоферрата (III) увеличивается с увеличением содержания хитозана в мембране (от 0.01 до 1%). 2. Мембранообразующие смеси фермент/медиатор/полимер в водных и/или водно-органических средах для одностадийной капельной модификации электродов. Для создания биосенсоров со смещенным в область миллимолярных концентраций глюкозы линейным диапазоном предпочтительны мембранообразующие смеси на основе биосовместимых полимеров ПФС и хитозана, позволяющих контролировать диффузию медиаторов в мембране. Предложен способ модификации печатных электродов медиаторами (гексацианоферрат (III) калия, тионин, фенотиазин) на стадии печати (в составе углеродной пасты), который обеспечивает удобство одностадийной капельной модификации электродов ферментсодержащей мембраной. Однако при таком подходе максимально допустимая концентрация медиаторов ограничена реологическими свойствами углеродной пасты для печати. Истинные растворы ПФС для иммобилизации ферментов могут быть получены только в водно-органических смесях, причем остаточная активность фермента высока в средах с высоким содержанием изопропанола >80%, а чувствительность максимальна в мембранах 0.3 % ПФС. Трехкомпонентные мембранообразующие смеси (фермент/медиатор/полимер) на основе хитозана отличаются простотой изготовления, ввиду хорошей растворимости биополимера в водных растворах, и подходят для большинства водорастворимых медиаторов (гексацианоферрата (III) калия, метосульфата феназина и гексаамминрутения (III) хлорида). Определена каталитическая активность фермента (глюкозоксидазы) в хитозановых мембранах с содержанием полимера от 0.01 до 0.8% на электродах, модифицированных берлинской лазурью. Кажущая константа Михаэлиса уменьшается с увеличением содержания хитозана в мембранообразующей смеси от 0.01 до 0.1%, что говорит об увеличении активности иммобилизованного фермента в хитозановой мембране. Предельное значение KM составило 2.1 ± 0.2 мМ. Максимальная чувствительность биосенсоров (49 ± 2 мА·М-1·см-2) на основе берлинской лазури достигается для мембранообразующих смесей, содержащей 0.25% хитозана. 3. Медиаторные биосенсоры с настраиваемым линейным диапазоном на основе глюкозоксидазы иммобилизованной в составе диффузионных мембран, содержащих медиатор. Предложен компактный дизайн двухэлектродных тест-полосок, изготавливаемых методом трафаретной печати. Для создания биосенсоров модификация электродов разработанными составами мембранообразующих смесей осуществляется капельным способом в одну стадию. Протестированы тест-полоски на основе медиаторов (фенотиазин, гексацианоферрат (III) калия, тионин) в составе углеродной пасты с иммобилизованным ферментом и на основе трехкомпонентных мембранообразующих смесей медиатор/фермент/полиэлектролит. Для тест-полосок на основе гексацианоферрата (III) калия (8-13% в углеродной пасте) и глюкозоксидазы, иммобилизованной в ПФС, чувствительность сенсоров составила 9 – 13 мА·М-1·см-2, а линейный диапазон определяемых концентраций глюкозы - от 1 до 20 мМ. Использование мембран на основе хитозана (0.002 – 0.01%), вместо ПФС, для иммобилизации глюкозооксидазы на таких электродах приводит к смещению линейного диапазона в область высоких концентраций глюкозы: от 5 до 30 мМ. Показано, что коэффициенты чувствительности тест-полосок возможно повысить на порядок при использовании фенотиазина (30-70 мМ) в составе мембранообразующего раствора. Использование трехкомпонентных мембранообразующих смесей на основе водных растворов хитозана позволяет в более широких пределах варьировать концентрацию медиаторов. Наилучшие аналитические характеристики получены для тест-полосок на основе смеси, содержащей 100 мМ гексацианоферрата (III) калия и 10 мг∙мл-1 глюкозооксидазы в 0.01% растворе хитозана. Кроме повышенного в два раза коэффициента чувствительности (23 ±1 мА·М-1·см-2), отклик тест-полосок линеен в диапазоне от 1 до 50 мМ глюкозы, что является рекордным значением верхнего предела обнаружения для глюкозных биосенсоров. 4. Биосенсоры на основе глюкозодегидрогеназы, включенной в прямой биоэлектрокатализ, усиленный проводящими наноматериалами. Для увеличения эффективности прямого биоэлектрокатализа предложена со-иммобилизация фермента с наночастицами сажи и проводящими полимерами в полиэлектролите. Со-иммобилизация глюкозодегидрогеназы в полимерные матрицы на основе ПФС с наночастицами сажи позволяет увеличить предельный каталитический ток до 25 мкА·см-2 и на порядок увеличить константу Михаэлиса до 0.15 мМ, по сравнению с иммобилизацией наночастиц сажи с ферментом без полиэлектролита. Биосенсоры на основе ПФС и наночастиц самодопированного боронат-замещенного полианилина, обладают сравнимыми характеристиками: KM 0.18 мМ и предельный каталитический ток 2.2 мкА·см-2. На примере пленок проводящего самодопированного полианилина с адсорбированным ферментом показано увеличение предельного каталитического тока в 7 раз и константы Михаэлиса в 2 раза при регистрации амперометрического сигнала биосенсоров при потенциале 0.0 В вместо 0.3 В, обусловленное смещением области электроактивности полианилина в нейтральных средах в более низкие потенциалы. 5. Хроноамперометрия и кулонометрия с тест-полосками на основе трехкомпонентных мембранообразующих смесей. Хроноамперометрические отклики биосенсоров, зарегистрированные в условиях скачка потенциала, представляют собой экспоненциально убывающие кривые, в связи с чем амперометрическая регистрация сигнала тест-полоски в начальный момент времени является предпочтительной. Максимальная чувствительность в режиме хроноамперометрии достигается на 3 – 6 секундах измерения токового отклика после наложения потенциала. Режим кулонометрии позволяет повысить точность измерения (коэффициенты вариации снижаются в среднем в 2 раза), при этом линейность отклика биосенсора остается в том же диапазоне. 6. Стабильность биосенсоров, стабильность мембранообразующей смеси. Более 50% исходного отклика сохраняется при выдерживании биосенсоров с наилучшими аналитическими характеристиками в течение 3 часов при температуре 60°C. В таких же условиях отклик коммерческих тест-полосок составлял лишь 25% от исходного. При хранении тест-полосок при комнатной температуре в течение 3 недель отклик биосенсора составляет в среднем 88% от исходного в диапазоне концентраций от 1 до 30 мМ. При этом сама мембранообразущая смесь может храниться при 4°C в течение недели без потери характеристик тест-полосок, производящихся на ее основе. 7. Публикация в высокорейтинговом журнале, результаты работы представлены на научных конференциях. В течение этапа опубликована статья в журнале Biosensors and Bioelectronics (IF = 12.5). Результаты работы представлены на двух международных конференциях. Под руководством руководителя проекта защищены 2 курсовые работы студентов химического факультета МГУ.
2 1 января 2023 г.-31 декабря 2023 г. Электрохимические биосенсоры с настраиваемым линейным диапазоном для персональных глюкометров
Результаты этапа: 1. Печатные электродные структуры на основе различных углерод- и серебросодержащих паст Удобным для массового производства способом изготовления двухэлектродных структур для тест-полосок является метод трафаретной печати. При этом характеристики будущих тест-полосок зависят не только от способа модификации структуры, но и от качества и состава углеродного и серебряного покрытий. С целью импортозамещения паст Gwent (Sun Chemical, Великобритания), наиболее распространенного изготовителя материалов для печати электродов, использовали серебро- и углеродсодержащие пасты других производителей, в том числе отечественных: Дельта-пасты (Россия), ФГБНУ ТИСНУМ (Россия) и Jelcon (Япония). Вольтамперная характеристика электродов в растворе медиатора является одним из основных критериев пригодности электродного покрытия для электрохимических измерений. Мы показали, что наблюдаемая в некоторых случаях блокировка электроактивности отрицательно-заряженного медиатора (феррицианида) не препятствует переносу заряда в случае положительно-заряженных медиаторов. Из паст российского производства наилучшие тест-полоски (на основе GP5) характеризуются близким к Gwent значением коэффициента чувствительности и широким диапазоном линейности (1-30 мМ). Использование серебросодержащей пасты производства Дельта-пасты позволяет в 1.5 раза повысить коэффициент чувствительности (44±2 мА∙см-2∙М-1), при сохранении линейного диапазона от 1 до 30 мМ глюкозы. Добавка наночастиц сажи, как в состав углеродсодержащей пасты, так и в состав мембранообразующих смесей, не оказывает влияния на чувствительность, но обеспечивает широкий диапазон линейности (1-50 мМ глюкозы) и позволяет повысить воспроизводимость измерений в области высоких концентраций глюкозы. Таким образом, при создании тест-полосок необходимо учитывать характеристики компонентов пасты для трафаретной печати электродных структур, влияющих на электроактивность медиаторов разного заряда. 2. Глюкозные биосенсоры и тест-полоски на основе трехкомпонентных ферментных мембран различного состава Оптимальный состав трехкомпонентных мембранообразующих смесей (медиатор, фермент, полиэлектролит) для изготовления тест-полосок определяется следующими факторами: 1) подвижностью медиатора в мембране; 2) реологическими свойствами смеси для капельного нанесения; 3) стабильностью и сохранением активности фермента. По сравнению с водно-спиртовыми смесями, водные растворы отличаются высокой стабильностью и воспроизводимостью в условиях капельной модификации подложек. Наиболее перспективным способом создания тест-полосок в одну стадию, обеспечивающим высокую чувствительность и широкий линейный диапазон явилось капельное нанесение мембранообразующих смесей на основе глюкозооксидазы, хитозана и водорастворимых медиаторов (гексацианоферрат (III) калия, метосульфат феназина, гексаамминрутения (III) хлорид, 1,1-ферроцендиметанол). Выявлена прямая зависимость коэффициентов чувствительности тест-полосок от скорости высвобождения медиатора из мембраны или материала электрода, предложен способ оценки константы скорости этого процесса. В случае положительно-заряженного полиэлектролита (хитозана) высокие значения константы соответствуют медиаторам положительного заряда. Рекордная чувствительность при регистрации сигнала на 5-й секунде после приложения потенциала достигнута для наиболее «быстро высвобождающегося» медиатора хлорида гексаамминрутения (III), в то время как тест-полоски на основе метосульфата феназина, адсорбирующегося на электроде, обладают самым низким коэффициентом чувствительности (13.1±0.5 мA∙M-1∙cм-2). Различное содержание хитозана в мембране позволяет управлять диффузионной подвижностью медиатора. Данные по скоростям высвобождения медиаторов из мембран с различным содержанием полиэлектролита также хорошо коррелируют с полученными значениями коэффициентов чувствительности тест-полосок. Для высокоточной детекции глюкозы в микролитровых объемах (менее 3 мкл) биосенсоры были модифицированы капилляром. Варьируя размер капилляра и его гидрофильность (обработка материала капилляра раствором ПАВ) возможно управлять аналитическими характеристиками тест-полосок. В течение второго года выполнения проекта найдены оптимальные составы мембранообразующих ферментсодержащих смесей на основе хитозана и всех рассмотренных медиаторов, обеспечивающие широкий диапазон линейности глюкозных тест-полосок: от 1 до 30-50 мМ и высокие коэффициенты чувствительности от 10 до 37 мА∙см-2∙М-1. 3. Селективность и стабильность тест-полосок на основе мембран различного состава Величина амперометрического отклика медиаторного биосенсора максимальна при регистрации сигнала при потенциале в области существования его окисленной формы, в соответствии с механизмом работы биосенсоров второго поколения. При использовании ферроцианида или ферроцендиметанола оптимальный рабочий потенциал соответствует 0.3 В. Показано, что при этом потенциале токи окисления восстановителей (0.2 мМ парацетамол, аскорбиновая и мочевая кислоты) не вносят значительного вклада в сигнал биосенсора. Чтобы исключить ложноположительный сигнал, обусловленный присутствием восстановителей в крови, созданы тест-полоски на основе низкопотенциальных медиаторов: хлорида гексаамминрутения (III) и метосульфата феназина, при этом рабочий потенциал удается понизить до 0.1 и 0.2В соответственно. Сравнение разработанных тест-полосок на основе свободно диффундирующих медиаторов с высокоселективными биосенсорами первого поколения на основе берлинской лазури показало, что чувствительность последних в 3-5 раз ниже (7.4±0.4 мА•М-1•см-2), а линейный диапазон определяемых концентраций глюкозы ограничен сверху 15 мМ. Таким образом, использование диффузионно-подвижных медиаторов предпочтительно для линейности отклика биосенсора в области высоких концентрации глюкозы. Использование комплексов железа или рутения в составе трехкомпонентных мембранообразующих смесей, обеспечивает высокую стабильность тест-полосок. В ходе пятичасового экспресс-теста при повышенной температуре (60 °С), ускоряющей инактивацию фермента. Коэффициент чувствительности тест-полосок на основе [Ru(NH3)6]Cl3 и K3[Fe(CN)6] сохраняется на 86%. В то время как коммерческие тест-полоски сохраняли лишь 20% от первоначальной чувствительности уже после трех часов. 4. Валидация разработанных глюкозных тест-полосок для анализа цельной крови Важным аспектом является применимость тест-полосок для анализа цельной крови. Правильность подтверждена путем анализа сертифицированных сывороток крови, а также венозной крови, полученной в сертифицированных лабораториях. Тест-полоски, изготовленные путем капельного нанесения на поверхность электрода мембранообразующих смесей на основе гексацианоферрата (III), фенотиазина и гексаамминрутения (III), применимы для анализа неразбавленных сывороток крови: найденные концентрации глюкозы в сыворотках крови соответствуют значениями, заявленным в сертификате. По сравнению с коммерческими тест-полосками, чувствительность которых в цельной крови значительно снижается по сравнению с модельными растворами (в 3 раза) для разработанных в проекте получен самый высокий показатель сохранения чувствительности в крови: 97%. Широкий диапазон линейности (1-35 мМ глюкозы) также сохраняется и при измерениях в крови. Таким образом, совместная иммобилизация медиатора и фермента в хитозане позволяет добиться стабильных аналитических характеристик тест-полосок даже в цельной крови и обеспечивает точное определение уровня глюкозы в гипо- и гипергликемических состояниях. По результатам второго года выполнения проекта опубликовано 2 статьи: в журнале Journal of Electroanalytical Chemistry (IF 4.5, Q1) и Engineering Proceedings и сделаны доклады на всероссийских и международных конференциях.

Прикрепленные к НИР результаты

Для прикрепления результата сначала выберете тип результата (статьи, книги, ...). После чего введите несколько символов в поле поиска прикрепляемого результата, затем выберете один из предложенных и нажмите кнопку "Добавить".