![]() |
ИСТИНА |
Войти в систему Регистрация |
Интеллектуальная Система Тематического Исследования НАукометрических данных |
||
Наша планета населена вирусами, многие из которых являются возбудителями опасных заболеваний человека и животных. Одной из наиболее широко распространённых групп являются вирусы с положительным РНК-геномом, к которым относятся, в частности, пикорнавирусы – патогены человека и животных (возбудители заболеваний респираторной и нервной систем, кишечника, сердца, глаз, мышц, печени и др.) Методы классической вирусологии и молекулярной биологии позволили сильно продвинуться в понимании механизмов вирусной инфекции и того, как клетка сопротивляется ей, однако на многие вопросы ответить пока не удаётся. Появление системной биологии придало новый импульс этим исследованиям: современные методы (CRIPSR/Cas-опосредованный генетический скрининг, анализ транскриптома и протеома, рибосомный профайлинг и др.) позволяют анализировать изменения, происходящие в клетке в целом, и наблюдать за работой отдельных систем в глобальном контексте. Обнаруженные таким образом явления затем могут быть изучены классическими методами молекулярной и клеточной биологии. В рамках данного проекта методами системной биологии будут проведены исследования механизмов вирусных инфекций клеток млекопитающих. Для этого будет использовано несколько хорошо отработанных в нашем коллективе моделей – прежде всего, пикорнавирусных (циркулирующие в природе штаммы энтеро- и кардиовирусов, а также «ослабленные» лабораторные линии с искусственно введёнными мутациями, в том числе по генам системы противодействия врождённому клеточному иммунитету). Будет проведён CRISPR/Cas-опосредованный генетический скрининг культивируемых клеток человека и мыши с последующим заражением такими вирусами, что позволит идентифицировать гены клетки-хозяина, необходимые для заражения и для развития продуктивной вирусной инфекции. С целью изучить динамику изменений трансляции как клеточных, так и вирусных мРНК будет также проведён анализ транслятома и транскриптома клетки при пикорнавирусной инфекции методом рибосомного профайлинга. Полученные данные будут использованы для поиска новых мишеней для антивирусной терапии, а также могут быть применены для разработки новых безопасных штаммов онколитических вирусов. В проекте будут использованы компетенции трёх научных коллективов, в том числе специализирующихся на изучении вирусных инфекций, биосинтеза белка, имеющих большой опыт работы в области системной биологии и успешно применяющих описанные методики.
Our planet is populated by viruses, many of which are the cause of dangerous human and animal diseases. One of the most widespread groups is formed by viruses with positive RNA genomes, including picornaviruses (pathogens of the respiratory and nervous systems, intestine, heart, eyes, muscles, liver, etc.) Classical methods of virology and molecular biology have made a great advance in understanding the mechanisms of viral infection and cell resistance, but many issues have not yet been resolved. Systems biology provides a new impetus to these studies: current approaches (CRIPSR/Cas-mediated genetic screening, transcriptome and proteome analysis, ribosomal profiling, and others) make it possible to analyze changes in the whole cell and focus on individual systems in the global context. The knowledge obtained in this way can then be confirmed by classical methods of molecular and cellular biology. In this project, we will use systems biology approaches to study the mechanisms of viral infections in mammalian cells. We will use several models that have been developed by our team - first of all, picornaviruses (entero- and cardiovirus lines circulating in nature, as well as attenuated laboratory strains with artificially introduced mutations, including genes affecting the cellular innate immune response systems). We will perform the CRISPR/Cas-mediated genetic screening of cultured human and mouse cells, followed by their infection with such viruses. This will let us to identify host genes necessary for infection and productive viral infection. We will then perform a translatome and transcriptome analysis of the picornavirusinfected cells by ribosomal profiling, to study a dynamics of changes in both cellular and viral mRNA translation. The data obtained will be used to identify new targets for antiviral therapy, and can also be used to develop safe strains of oncolytic viruses. The project will join efforts of three research teams, including world-leading experts in picornaviral infections, protein biosynthesis, and members having experience in systems biology and modern techniques described above.
грант РНФ |
# | Сроки | Название |
1 | 27 мая 2020 г.-31 декабря 2020 г. | Изучение молекулярных механизмов взаимодействия вирусов с клеткой методами системной биологии. Этап 1. |
Результаты этапа: | ||
2 | 1 января 2021 г.-31 декабря 2021 г. | Изучение молекулярных механизмов взаимодействия вирусов с клеткой методами системной биологии. Этап 2. |
Результаты этапа: | ||
3 | 1 января 2022 г.-31 декабря 2022 г. | Изучение молекулярных механизмов взаимодействия вирусов с клеткой методами системной биологии. Этап 3. |
Результаты этапа: Получены моноклональные линии на основе клеток HEK293T, нокаутные по генам SLC35A1, SLС35B2, PA2G4 и MBNL1. Проведён анализ устойчивости клеток с нокаутом генов SLC35A1 и SLC35B2 к вирусу Льюнган (LV) и вирусу японского энцефалита (JEV) соответственно, показана небольшая, но воспроизводимая задержка в цитопатическом действии вирусов, подтверждающая важность остатков сиаловой кислоты для первичной адгезии вируса LV и гепарансульфатов – для JEV. На большой панели серотипов энтеровирусов из коллекции Института полиомиелита проанализировано цитопатическое действие вирусов на клетки, нокаутные по гену MBNL1, в сравнении с «диким типом». Показано, что некоторые энтеровирусы группы B (Echo6 Echo7, Echo9, Echo11, Echo14, CVA9 и др.) убивают нокаутные клетки гораздо хуже, с задержкой в несколько дней, в то время как энтеровирусы групп A и C, а также некоторые B (например, CVB3, CVB5) не чувствительны к отсутствию MBNL1. Анализ хода инфекции в клетках «дикого типа» и мутантах по MBNL1 проанализирован Вестерн-блот-гибридизацией с антителами к белку VP1 эховируса Echo11, анализом вирусных титров и RT-qПЦР вирусной РНК. Все три подхода дали сходную картину: гораздо менее эффективная инфекция в нокаутных клетках. С помощью специально изготовленного набора репортерных мРНК-конструкций, кодирующих люциферазу под контролем IRES-элементов разных пикорнавирусов (Echo6, Echo11, PV и PTV) показано, что в обычных условиях специфичных различий в уровне трансляции мРНК с IRES-элементами эховирусов между клетками wt и MBNL1 KO не наблюдается. Показано, что фосфорилирование сенсора ER-стресса Ire1 активируется в клетках HeLa на ранних стадиях энтеровирусной инфекции, но подавляется на более поздних стадиях, и что Ire1 расщепляется в клетках, инфицированных полиовирусом и вирусом Коксаки B3, через 4-6 ч после инфицирования. Показано, что один из квассиноидов растительного происхождения связывается с рибосомой, ингибирует биосинтез белка и в низких (нетоксичных для клетки) концентрациях частично или полностью предотвращает цитопатическое действие энтеровирусов на культивируемые клетки человека. |
Для прикрепления результата сначала выберете тип результата (статьи, книги, ...). После чего введите несколько символов в поле поиска прикрепляемого результата, затем выберете один из предложенных и нажмите кнопку "Добавить".