Эндоцитоз у мицелиальных грибов: роль в морфогенезе и адаптацияхНИР

Endocytosis in filamentous fungi^ its role in morphogenesis and adaptations

Источник финансирования НИР

грант РФФИ

Этапы НИР

# Сроки Название
1 1 января 2016 г.-31 декабря 2016 г. Cпецифические особенности эндоцитоза среди представителей разных эколого-трофических групп грибов с помощью флюоресцентного маркера FM4-64\АМ4-64
Результаты этапа: Полученные в 2016 году важнейшие результаты 1. Создание коллекции грибов Сбор образцов (плодовых тел макромицетов, из которых затем выделяли матричную культуру) проводили в окрестностях Звенигородской биологической станции имени С.Н. Скадовского (ЗБС МГУ), в окрестностях Ромашковского леса района Крылатское (Москва), в окрестностях городов Одинцово и Пушкино Московской области. Итоговая коллекция представлена 13 изолятами макромицетов, из которых 10 – природные изоляты (табл. 1), 3 - получены из коллекции грибов кафедры микологии и альгологии МГУ имени М.В. Ломоносова (табл. 2). Таблица 1. Эколого-трофическая принадлежность природных изолятов Таблица 2. Эколого-трофическая принадлежность грибов из коллекции кафедры микологии и альгологии. 2. Наращивание мицелия ксилотрофных грибов, копротрофных и гумусовых базидиомицетов на полных и дефицитных по содержанию азота питательных средах Для дальнейшего изучения особенностей эндоцитоза у мицелиальных грибов было необходимо установить способность роста культур из созданной коллекции на разных питательных средах, оценить их морфо-культуральные признаки и эффективность мечения эндоцитозным маркером АМ4-64. Изоляты культивировали на следующих питательных средах: мальт-агар 0,1; 0,5; 1; 2,5°Б; среда Чапека (с источником азота и без него (базидиомицетные ксилотрофы известны своей азотной олиготрофностью)). Каждые три дня оценивали динамику роста мицелия и развитие воздушного мицелия. Проводили окрашивание мицелия, растущего на разных средах, флуоресцентом АМ4-64 по методике, описанной в работе Ли с соавторами (Lee et al., 2007). По результатам экспериментов было показано, что мальт-агар не подходит для изучения динамики эндоцитоза, так как при окрашивании мицелия в тонком слое агаризованной среды многочисленные включения в среде мешают наблюдению флуоресценции. Подходящая среда для изучения динамики эндоцитоза у базидиальных грибов с помощью флуоресцентной микроскопии – стандартная среда Чапека. Среда Чапека без азота также не подходит для полноценной работы, направленной на изучение эндоцитоза, поскольку исследуемые грибы образуют на данной среде слабый воздушный мицелий. Сравнительная оценка роста мицелия грибов из исходной коллекции на питательных средах, степени развития воздушного мицелия, толщины мицелия и способности к окрашиванию АМ4-64 позволила выбрать несколько видов грибов из разных эколого-трофических групп (табл. 3) для дальнейшего изучения процесса эндоцитоза. Таблица 3. Список отобранных грибов для изучения динамики эндоцитоза 3. Мечение эндомембранных структур мицелия флуоресцентным маркером эндоцитоза АМ4-64. Сравнение динамики эндоцитоза (от мечения плазмалеммы до мембран вакуолей) в вегетативном мицелии у представителей разных эколого-трофических групп Динамику эндоцитоза изучали с помощью окрашивания мицелия эндоцитозным маркером AM4-64. Механизм действия АМ4-64 показан на рис. 1. Наблюдение в течение 40 минут за перемещением AM4-64 от цитоплазматической мембраны к мембранам везикул, эндосом и вакуолей позволило выявить 4 стадии эндоцитоза, которые отображены на рис. 2 в виде фотографий и схем. На рис. 3 представлена динамика эндоцитоза у выбранных для дальнейшего исследования видов базидиомицетов. Быстрее всего эндоцитоз протекает C. cinerea и P. ostreatus, чуть медленнее у Armillaria sp. и F. pinicola, еще медленнее у R. solani (рис. 3). По результатам экспериментов было установлено, что наиболее подходящие временные промежутки наблюдения процесса перемещения АМ4-64 от цитоплазматической мембраны к мембранам вакуолей от 0 до 40 минут. За это время происходит окрашивание 50% и более мембран вакуолей у всех исследуемых видов грибов (40% для R. solani). Близкие результаты получены в пионерских работах на мицелиальных грибах (Pisolithus tinctorius, Aspergillus nidulans, Lentinula edodes). Для грибов P. tinctorius, A. nidulans и L. edodes продемонстрировано накопление в вакуолях гиф эндоцитозного маркера FM4-64 за 1 час (Cole et al., 1997; Fischer-Parton et al., 2000; Read and Kalkman, 2003; Penalva, 2005; Lee et al., 2007). Эндоцитоз по данным некоторых авторов (Vida, Emr, 1995) - температурозависимый процесс, поэтому следующим этапом нашего исследования стало определение оптимального температурного режима поглощения маркера эндоцитоза и сопоставление полученных результатов с оптимальной температурой роста мицелия у исследуемых видов грибов. 4. Определение оптимальной температуры для роста мицелия и эндоцитоза у выбранных штаммов Определяли зависимость скорости роста от температуры у следующих видов грибов: Armillaria sp., C. cinerea, F. pinicola, P. ostreatus, R. solani. При 0° С рост мицелия отсутствует у всех грибов. Повышение температуры до 8° С приводит к незначительному повышению скорости роста мицелия всех исследуемых видов грибов, а в случае ксилотрофа-сапротрофа F. pinicola скорость роста повышается в три раза относительно других видов грибов. При 15° С максимальная скорость роста характерна для другого ксилотрофа-сапротрофа P. ostreatus (рис. 4). Температурный диапазон 22 - 28° С близок к оптимальному для роста мицелия всех исследуемых видов грибов (исключение составляет P. ostreatus). В целом все виды тестируемых грибов оказались мезофилами, за исключением P. ostreatus. Изучение динамики эндоцитоза проводили на грибах Armillaria sp., C. cinerea, F. pinicola, P. ostreatus, R. solani при следующих температурных режимах: 0о, 8о, 15о, 22о, 28оС (рис. 5). Результаты опыта позволили выделить три типа динамики эндоцитоза при разных температурных режимах у изучаемых видов базидиальных грибов: первый тип эндоцитоза характерен для фитопатогенного гриба R. solani, второй – для гумусового сапротрофа C. cinerea и третий – для ксилотрофов Armillaria sp., F. pinicola, P. ostreatus. Тип 1: у R. solani эндоцитоз при 0° С не наблюдают, при 8° С эндоцитоз протекает с низкой скоростью. Повышение температуры (15, 22 и 28° С) значительно повышает скорость эндоцитоза. Тип 2: эндоцитоз, характерный для C. cinerea, протекает с высокой скоростью в диапазоне температур от 0 до 22° С. При 28° С скорость эндоцитоза значительно снижается. Тип 3: эндоцитоз, характерный для ксилотрофов Armillaria sp., F. pinicola и P. ostreatus, протекает в более широком диапазоне температур от 0 до 28° С. Такой тип эндоцитоза показан другими авторами для Lentinula edodes, который также является ксилотрофом-сапротрофом (Lee et al., 2007). Сравнение динамики эндоцитоза и скорости роста мицелия при одинаковых температурных режимах у исследуемых видов базидиальных грибов выявило некоторую связь между данными процессами. Так например, при 0° С мицелий грибов не растет, но поглощает АМ4-64 (за исключением R. solani). При 8° С мицелий всех видов грибов растет медленно, кроме F. pinicola, у которого и скорость эндоцитоза выше в сравнении с другими видами. Повышение температуры до 15° С и выше увеличивает скорости как эндоцитоза, так и роста колоний. При температурах 22 и 28о С скорость роста мицелия всех исследуемых видов грибов напрямую связана с динамикой эндоцитоза. При температурах ниже 22оС прямая зависимость сохраняется только для патогена R. solani. Можно предположить, что эндоцитоз играет важную роль в питании грибов, поэтому влияет на скорость роста колонии. Причем более тесная связь между процессами роста и эндоцитоза характерна для патогенного гриба R. solani. 5. Действие ингибиторов на динамику эндоцитоза у фитопатогенного гетеробазидиального гриба R. solani Мицелий гриба R. solani имеет высокую скорость роста (5 мм/сут при оптимальной температуре роста 25оС) на стандартной питательной среде Чапека, состоит из крупных клеток 6–8 мкм шириной и более 100 мкм длиной, что делает гриб удобным объектом для флуоресцентного анализа. Оценку влияния ингибиторов проводили с помощью микроскопического анализа поглощения клетками мицелия флуоресцентного маркера эндоцитоза АМ4-64. Использовали следующие ингибиторы: латрункулин А (Santa Cruz Biotechnology, США; концентрации 10 и 20 мкМ, время инкубации 20 и 40 мин) – ингибитор сборки актиновых филаментов; нокодазол (Santa Cruz Biotechnology, США, концентрации 2 и 10 мкг/мл, время инкубации 30 и 60 мин) – связывается с тубулином, препятствуя полимеризации микротрубочек; диназор (Sigma, США; концентрации 20, 50, 100 мкМ, время инкубации 30 мин) – ингибитор разных видов динамина, который участвует в отщеплении эндоцитарной везикулы от цитоплазматической мембраны; монодансилкадаверин (Sigma, США; концентрация 0,3 мМ, время инкубации 30 и 60 мин) – действует на клатринзависимый путь эндоцитоза у животных; натамицин (концентрации 100 и 200 мкМ, время инкубации 30 и 60 мин) – необратимо связывается с эргостерином, влияет на кавеолин/RAFT-зависимый эндоцитоз (здесь используем термин "липидно-доменный эндоцитоз"). Проводили преинкубацию агаровых блоков с мицелием R. solani в растворе с ингибитором (опыт) или в питательной среде (контроль), отмывали дважды от ингибиторов и окрашивали флуоресцентом АМ4-64 по методу, описанному выше. Эксперименты по ингибированию эндоцитоза у R. solani проводили в трех биологических повторностях, варьировали концентрацию и время инкубации в растворе ингибиторов перед мечением АМ4-64. Оценивали эффект ингибирования путем сравнения с контролем (инкубация мицелия в питательной среде) при наблюдении во временных интервалах 0–15 мин и 15–30 мин. Латрункулин А (20 мкМ, 20 мин, 28°С) полностью блокирует эндоцитоз у R. solani (рис. 6А, из рисунка видно, что все проанализированные опытные клетки мицелия соответствуют стадии 0 после предобработки латрункулином, не образуются даже первичные везикулы). Полученный результат указывает на участие актиновых филаментов уже в самых ранних стадиях эндоцитоза у R. solani. Такой результат не является неожиданным: ранее было показано, что актиновые филаменты участвуют в формировании эндоцитарных везикул и в их транспорте к ранним эндосомам у дрожжей (Girao et al., 2008). Установлено, что латрункулин А подавляет эндоцитоз у ксилотрофного гриба Lentinula edodes (Lee et al., 2007). В одной из современных обзорных работ (Doherty, McMahon, 2009) шести типам эндоцитоза из десяти у животных авторы приписывают связь с актином. Исследуя ингибитор образования микротрубочек нокодазол (10 мкг/мл, 30 мин, 25°С, рис. 6Б), получили неожиданный результат. Из диаграммы видно, что нокозадол сильно замедляет эндоцитоз у R. solani и предотвращал включение метки в вакуолярную систему (стадия 3). Формирование первичных везикул и мечение эндосом происходит, но в 3-5 раз реже, чем в контроле. Таким образом, микротрубочки участвуют, хотя их вклад и слабее, чем у актина, даже в формировании первичных везикул. Такой результат не совпадает с данными, полученными для животных и даже для отдельных других мицелиальных грибов - принято считать, что, как минимум, ранние стадии эндоцитоза не зависят от тубулинового цитоскелета. Мы полагаем, что деполимеризация микротрубочек приводит к блокированию транспорта ранних эндосом – известно, что, по крайней мере, в верхушечных клетках грибов ранние эндосомы активно двунаправленно перемещаются с помощью микротрубочек. "Остановка" ранних эндосом, скорее всего, приводит к ингибированию их созревания и/или к предотвращению транспорта эндосомального груза в вакуоли-лизосомы. Подавление начальных этапов эндоцитоза нокодазолом может быть связано с: а) нарушением распределения актина при деполимеризации микротрубочек; б) непосредственным участием моторных белков и тубулина в отшнуровывании, например, крупных (макропиноцитарных) везикул; в) существованием обратной регуляции; например, прекращение транспорта ранних эндосом может влиять на формирование первичных везикул. Ингибитор динамина диназор (100 мкМ, 30 мин, 28° С) полностью ингибирует эндоцитоз у R. solani (рис. 6В). Динамин – белок, участвующий в отделении первичной эндоцитарной везикулы от плазмалеммы в некоторых типах эндоцитоза. Согласно уже упомянутой обзорной работе, у животных динамин так или иначе принимает участие в шести из десяти типов эндоцитоза. Полученный нами результат может свидетельствовать о том, что у R. solani все эндоцитозные пути динамин-зависимые. Однако возможно и другое объяснение - вероятно, не существует на 100% специфичного ингибитора, как и антибиотика, антитела и т.д. Так, для диназора показано воздействие не только на динамин, но и на актин (Dutta, Donaldson, 2012). Возможно, последняя активность усиливает ингибиторное действие диназора на эндоцитоз R. solani. Монодансилкадаверин (0,3 мМ, 60 мин, 25° С) также полностью блокирует эндоцитоз у R. solani (рис. 6Г). Данный ингибитор используют как ингибитор клатрин-зависимого эндоцитоза, однако известны проявления его активности в отношении макропиноцитоза, фагоцитоза и актина. Так же, как в случае с диназором, полное блокирование эндоцитоза у R. solani может быть связана и с доминированием клатрин-зависимого пути у данного гриба, и с усилением эффекта ингибитора за счет его неспецифического действия. Натамицин - полиеновый противогрибной антибиотик. Как и другие полиеновые антибиотики: нистатин и филиппин, он необратимо связывается со стеринами цитоплазматической мембраны, подавляя кавеолин/липидно-доменный эндоцитоз (Ivanov, 2008; Dutta, Donaldson, 2012). На рис. 6Д видно, что натамицин (200 мкМ, 30 мин, 25° С), особенно в первые 15 мин, лишь незначительно снижает формирование первичных везикул, но полностью подавляет стадии 2 и 3 эндоцитоза. Тотальное подавление эндоцитоза одновременно с диназором и монодансилкадаверином у R. solani теоретически возможно, поскольку клатрин-зависимый эндоцитоз является обычно и динеин-зависимым. Однако полное подавление транспорта метки в эндосомы и вакуоли диназором, монодансилкадаверином и натамицином у одного и того же гриба уже сложнее укладывается в теорию, поскольку клатрин-зависимый и липидно-доменный эндоцитозы – совершенно разные типы эндоцитозного процесса. К тому же, если бы у R. solani доминировал липидно-доменный эндоцитоз, то натамицин предотвращал бы, скорее всего, и формирование первичных везикул. Приписываемое полиеновым антибиотикам пермеабилизирующее действие на клетки грибов (при определенных концентрациях) в нашем случае исключено, поскольку во всех опытах с ингибиторами были поставлены контрольные эксперименты с йодидом пропидия и пермеабилизацию мы не обнаружили. Плюс, при пермеабилизации плазмалеммы R. solani АМ4-64 беспрепятственно устремился бы в клетку и сигнал распространился во всех эндомембранных структурах. Таким образом, можно предположить, что ингибиторное действие натамицина обусловлено не столько подавлением липидно-доменного эндоцитоза, сколько другими его побочными эффектами. Так, для полиеновых антибиотиков тоже показано их влияние на актин клетки, причем предполагают, что они нарушают связь между актином и плазмалеммой (Ivanov, 2008). Тогда можно предположить, что натамицин не подавляет полностью формирование первичных везикул (стадия 1 присутствует в диаграмме рис. 6Д), но препятствует их отделению от плазмалеммы и транспорту к эндосомам. Полученные результаты дискуссионны, и мы выдвигаем различные предположения о механизмах грибного эндоцитоза. Нами установлено, что все использованные ингибиторы действуют на динамику поглощения флуоресцентной метки у R. solani. Причем только нокодазол и натамицин не вызывают тотального блокирования эндоцитоза, но значительно его замедляют или блокируют поздние стадии. Остальные ингибиторы полностью исключают поглощение метки клетками гриба (не видны даже формирующиеся первичные везикулы). Как мы уже указали, такой результат противоречив, поскольку ингибиторы, подавляющие принципиально разные типы эндоцитоза (монодансилкадаверин и натамицин, например), не могут в одном и том же грибном штамме блокировать поглощение флуоресцентной метки на 100%. Возникает два общих предположения, объясняющие такой результат. Первое – неспецифическое действие использованных ингибиторов. И главным претендентом на неспецифическую мишень является актин. Действительно, в литературе указывают на широкое участие актина в разных типах эндоцитоза и у животных, и у грибов. Вместе с тем, для всех использованных в работе ингибиторов эндоцитоза известен эффект воздействия на актин. Второе - реагирование фитопатогенного гриба на ингибиторы в виде полного или почти полного выключения эндоцитоза может являться защитным механизмом против цитотоксических веществ, выделяемых растением-хозяином или другими микроорганизмами. Возможно, гриб предотвращает вход в свои клетки молекул извне, “почувствовав” в окружающей среде физиологически активные вещества, влияющие на грибной метаболизм. Второй гипотезе противоречат наши неопубликованные данные, полученные при инкубации культуры R. solani в присутствии антибиотиков – бензилпенициллина и гризеофульвина. Данные антибиотики не ингибировали эндоцитоз, хотя подавляли накопление биомассы мицелия R. solani. Подтвердив важную роль актина для эндоцитоза R. solani (и прямым ингибированием сборки актина, и через возможные побочные действия неактиновых ингибиторов), мы показали консервативную природу отдельных механизмов эндоцитоза у исследованного гриба. С другой стороны, влияние тубулина на ранние стадии эндоцитоза R. solani явным образом подтверждает существование уникальных эндоцитозных механизмов у мицелиальных грибов.
2 1 января 2017 г.-31 декабря 2017 г. Cпецифические особенности эндоцитоза среди представителей разных эколого-трофических групп грибов с помощью флюоресцентного маркера FM4-64\АМ4-64
Результаты этапа:

Прикрепленные к НИР результаты

Для прикрепления результата сначала выберете тип результата (статьи, книги, ...). После чего введите несколько символов в поле поиска прикрепляемого результата, затем выберете один из предложенных и нажмите кнопку "Добавить".